现场采集的样品包括（）.

在现场调查中，很重要的一项工作是正确采集、妥善保存和尽快送检样品，以及随后对样品检测结果进行正确的判读和分析。科学合理地采集、保存和运送样品或标本，将直接影响检测结果的可靠性；正确判读和分析检测结果，将现场调查结果和实验室结果密切结合，有利于更科学合理地分析突发事件或疾病暴发流行的原因，以及进行正确的卫生质量评价。
(一)样品采集的目的、作用和原则
现场调查的目的主要可分为两大类：一是查明突发公共卫生事件或疾病暴发流行的原因，二是进行卫生质量监测和评价。为了达到现场调查的目的离不开实验室检测证据的支持，而获取实验室证据的首要前提是采集合理的样品。以查明突发公共卫生事件或疾病暴发流行的原因为目的的实验室检测，检测的对象主要是病原微生物和毒物，检测结果能够为临床确诊病例、合理治疗、查明暴发原因、追踪传染源：切断传播途径、制定有效预防控制措施提供依据；以卫生质量监测和评价为目的的检测，检测对象既有病原微生物和毒物，又有指示微生物和其他一些和产品质量相关的因子，检测结果是评价的依据；无论是什么目的，实验室检测的对象又分为生物性因子和非生物因子。根据样品来源不同，样品又可分为生物性样品(来源于人的后称临床样品)、环境样品、动物及媒介昆虫样本和产品样品等。尽管根据调查目的、检测对象和样品种类不同，采样具有其特殊性，但应该遵循如下总原则：
1．注意生物安全采样中避免造成人员感染、标本和环境的污染。采用防护装备，注意安全操作和安全包装样品。需要采取的具体措施包括如下两方面：①个人肪护：采样时要戴手套，接触不同患者时不能重复使用一副手套，以免交叉感染，并留意手套是否有小的破损；采样中尽可能穿防护服，根据所估计的疫情级别，选择不同的防护服；采样后消毒要穿戴防护服和厚橡胶手套，对污染区表面和溢出物进行消毒；如怀疑有高度传染力的病原，需使用护目镜、呼吸面罩等；为了防止意外，确保安全，采样应备有急救包，供意外泄露时应急使用。②恰当处理污染废弃物：污染的可废弃设备和材料应先消毒后废弃；用过的针头妥善收集消毒，并按规定销毁或损毁；在暴发疫点使用过的防护服、设备、材料等使用化学消毒剂消毒后再清洗，特殊情况也可在现场建简易焚烧炉焚烧。
2．注意采样的代表性或针对性-以卫生质量评价为目的的样品采集，影响采样代表性的因素包括采样量、采样部位、采样时间、采样的随机性和均匀性，以及按批号抽样。同时还应考虑原料情况(来源、种类、地区、季节等)、加工方法、运输、保藏条件、销售中的各个环节(例如有无防蝇、防污染、防蟑螂及防鼠等设备)及销售人员的责任心和卫生认识水平等对样品可能的影响。以查明突发公共卫生事件或疾病暴发流行的原因为目的的样品采集，不要求样品的代表性，强调针对性，尽可能采集病原微生物含量最多的部位和足够检测用的样本；根据疾病表现和流行病学调查资料，指导采集正确的样品。
3．注意采样时间和种类采样时间和种类是病原体检测中的重要影响因素。一般原则是根据不同疾病的特点和临床表现，确定采样时间和标本种类。以分离培养细菌为目的，则应尽量在急性发病期和使用抗生素之前采集标本，如果已使用抗生素，采样和分离培养最好加入相应的中和剂(中和样品中残存的抑菌物质)或进行其他处理，避免抗菌药物对细菌培养的干扰。作病毒分离和病毒抗原检测的标本，应在发病初期和急性期采样，最好在发病1～2天内采取，此时病毒在体内大量繁殖，检出率高。
4．注意避免采样引入新的污染或者对微生物的杀灭因子所有采样用具、容器需严格灭菌，并以无菌操作采样。对容器基本要求是选耐用材料制成，容器包装好后可防渗漏，能承受空中或地面运送过程中可能发生的温度和压力变化。对微生物样品，应避免采样时对微生物的杀灭作用和引入新的抑菌物质，如容器是否有消毒剂的残留，或使用刚烧灼未冷却的采样工具。并注意保护目的微生物，注意使用正确的采样液和加人中和剂。
5．注意对样品的详细标记用于卫生质量评价的样品，应标明样品名称、编号、采样时间、采样量、采样者、检测项目等。以查明突发公共卫生事件或疾病暴发流行的原因为目的的样品，往往不是单一类型的样品，可能包括患者的标本、环境或者食品样品，以及相关的媒介生物，因此标记需要更详细，如标明标本的种类、标本性质、数量、统一的惟一识别编号及患者姓名、检验目的、临床诊断等信息，以供检验者参考。实验室可能需要其他信息来解释一些结果，如患者信息(年龄、性别、详细地址)，临床资料(发病日期、临床症状、治疗史、可疑的发病原因、采样前是否用抗生素)，急性或恢复期标本，症状类似患者的其他标本。因此，在暴发调查中个案调查的信息应尽量详细，并且和标本同时收集，保证标本和信息之间的符合性。
(二)样品采集的方法和注意事项
调查目的、检测对象和样品类型不同，样品采集的方法各异。以卫生质量监测和评价为目的的调查，样品类型主要是环境样品和产品样品包括水、土壤、空气、物品食品、化妆品、涉水产品、消毒及卫生用品等，主要检测卫生微生物和卫生理化指标，采样时遵循上述总原则，特别注意采样的代表性，检测卫生理化指标的样品可以不进行无菌操作，但不能引入其他的化学因子。以查明突发公共卫生事件或疾病暴发流行的原因为目的的样本采集，样品类型除上述两类可以作为原因样品外，主要需要采集的生物性样本如各种体液样本、呼吸道样本、消化道样本：皮肤样本，以及尸解或活检的各种组织器官样本等，如有必要，还应进行媒介生物或相关动物样本，如各种宿主动物的血液样本、排泄物样本、尸解样本以及各种昆虫样本等。因此，下面将结合调查目的和检测对象，介绍不同类型样品的采集方法和注意事项。
1．用于微生物分离培养或抗原检测的生物性样品主要用于查明突发公共卫生事件或疾病暴发流行的原因。
(1)咽拭子、洗漱液或痰液标本：①咽拭子的采集：让患者仰头张口，用压舌板压舌，用无菌棉拭子在咽部涂抹数次后，放入含2mlHank液的试管中，棉拭子接触手的部分应及时折断或剪断去掉；然后盖紧试管。②洗漱液的采集：用生理盐水或自配淡盐水约1，5ml作为洗漱液，让患者咳嗽后，倒入灭菌生理盐水或自配淡盐水约15ml，反复洗漱咽部1分钟，直接将洗漱液吐入灭菌容器内。③痰液标本：肺部感染应采取痰标本，以清晨第一口痰为最佳。采取标本的时间一般在发病的第一日采集，最迟不得超过3日，最好选择体温在38℃以上时采集。
(2)粪便标本：对黏液脓血便应挑取黏液或脓血部分，液状粪便采集水样便或含絮状物的液状粪便2～5ml；成形粪便至少取蚕豆大小粪便1块(约5g)放于灭菌容器内，最好加有保存液或增菌液。若无法获得粪便时，可用保存液或增菌液湿润过的棉拭子插入肛门4～5cm深处(小儿2～3cm)轻轻转动一圈，取直肠表面的黏液后取出，盛入运送培养基或保存液中送检，为保证多个检验项目的开展，同一患者应至少采集2支肛拭。采样时注意勿将尿液或水混入粪便或容器内，采样后尽快塞紧或旋紧容器，所采取的粪便标本应尽快送检，运送时间不得超过2小时，否则应保存在4～8℃条件下送检；集体腹泻或食源性疾病暴发患者粪便采集，应根据患者人数决定采取标本的数量；尽量在急性腹泻期及用药前采集。
(3)血液标本：作血液病原培养时，严格无菌采静脉血，一般成人采血10～15ml，儿童2～5ml，婴儿0.5～2ml，放入无菌的加入抗凝剂的有螺日容器或培养瓶中送检。作血片、暗视野检查可采耳垂血或指尖血。
(4)尿液标本：主要采用中段尿采集法，先用肥皂水清洗外阴部，再以无菌水洗净，一般取首次晨尿的中段尿10～20ml于无菌容器内。结核分枝杆菌集菌检查时，以一清洁容器留取24小时尿，取沉渣10～15ml送检。注意无菌操作并在用药前采集，最好在2～3小时内送到实验室检测，否则应在4～8℃条件下保存运送样品。
(5)脑脊液：在无菌条件下由腰椎穿刺抽取3～5ml，放于无菌试管或厌氧瓶内(需厌氧培养时)。用于细菌培养时标本采集后应立即送检；用于病毒培养时在4～8℃最多可维持48小时，否则需在-70℃保存；本操作最好在医院内由有经验的医生按腰椎穿刺术进行。
(6)皮肤标本：有时需要采集皮疹或皮肤病变标本帮助诊断。如怀疑皮肤炭疽或淋巴腺鼠疫时可从病变皮肤(焦痂和腹股沟淋巴结)取样做细菌学培养。出现囊疱疹或脓疱疹时可直接从囊疱或脓疱采集液体用于镜检或培养。采集疱疹标本时要注意无菌操作，刺破疱囊后用无菌拭子尽量拭抹足够量的疱疹内液体。
(7)尸体标本：进行解剖和取样。解剖前观察并记录外观状态，如新鲜程度、皮肤粘膜、淋巴结i尸僵程度和自然孔有无血性渗出物等。剖开后应观察皮下有无出血，胶样水肿，淋巴结、肝、脾是否大和有无其他病变，肺部有无充血，肝样实变、化脓和结节性病灶等。如需要采血则需进行心脏穿刺。采脑组织样本时，如不开颅，可用穿刺长针由鼻孔插入，一直刺到脑干和间脑部位吸出脑组织少许。剖检森林脑炎尸体时，可采取丘脑和小脑部分，其他型别脑炎可采海马回部位的脑组织块。如取脏器组织，先用灼热的金属压舌板接触一下采样部位，瞬时烙焦表面，清除杂菌，用剪刀剪取深部组织块。供分离病毒的组织要在死后5小时内取样。尸体如已腐烂，可锯一段带骨髓的股骨送检。至少取1～2g感染部位标本，放入单独的装有相应液体或培养基的无菌容器中(注意贴牢标签和拧紧螺口)，这些液体如：用于组织病理学切片的固定液，用于制备免疫荧光显微技术所需的冷冻切片的无菌盐溶液，用于分离细菌或病毒所需的各种转运培养基。装样本的容器封口后，表面用碘酒涂擦消毒后送检。为了避免尸体和解剖时的污染物成为传染源，解剖后尸体最好火化；不能火化则应离村庄和交通要道1km以外，深挖2m以上土坑，坑内和尸体周围撒生石灰，先填人可能被污染的土，后用净土填平；所用器材和隔离衣，凡耐热者均煮沸消毒40分钟，橡胶和塑料制品用1％～5％含氯消毒剂浸泡6小时以上。
2．用于病原体抗体检测的标本通常包括血液和脑脊液。采集血清样本可将10ml静脉血移入无抗凝剂的无菌螺口管，室温静置30分钟使之凝集，然后置4～8℃至少1～2小时(在此温度下可存放48～72小时)，离心收集血清。如能立即检测，采集的血液应在室温下尽快分离血清。如用于微量法试验，可用三棱针刺手指或耳垂部，再用毛细管采集，一般不少于0．3ml。用于检测IgM的血清一般采于发病1个月内；用于检测IgG的血液应于发病初期(1～3天)和恢复期(第一次采血后3～4周)各采集1次。脑脊液采集方法同前所述，一般于出现神经症状时采集，查IgM需采1份脑脊液，而查IgG则需收集2次，采集时间如前所述。
3．环境样品可用于检测环境被污染的状况，并对其进行卫生学评价，也可作为食源性疾病，突发公共卫生事件的原因样本。：这里主要介绍空气、水、土壤样品的采集方法。
(1)空气样品：一般需要用空气采样器采集，用于检测微生物或化学因子，包括毒物。空气中细菌和真菌还可使用平板沉降法。空气采样器有不同的分类方法，种类繁多，如按流量的不同，采样器可分为大、中、小三类：≥500L／min为大流量，499～11L／min为中流量，≤10L／min为小流量；根据采样器所用介质性质可分为固体采样器和液体采样器；根据采样器的工作原理可分为撞击式、沉降式、过滤式、静电吸附式、旋风式和离心撞击式六种。无论是哪种采样器，使用时应特别注意采样器的效率和适应范围等因素：如撞击距离、物理参数、粒子大小范围、气溶胶浓度、风向、风速等，以及考虑采样因子的生物学特性，选择适当的采样条件。平板沉降法由于方法简单，不需要特殊设备，虽然准确性低于仪器法，但仍被广泛应用，采样方法是将琼脂平板置于各采样点，打开平皿盖，扣放于平皿旁，暴皿于规定时间后立即盖好盖送检；注意根据房间面积确定采样布点，室内面积<30㎡时，设内、中、外对角线3点，距墙壁1m，距地面高1．5m；>30㎡者，设4角及中央5点，距墙壁1m，采样高度距地面高1．5m处。
(2)水样：既可用作环境卫生质量评价，也可能是突发公共卫生事件的原因样品。水样来源主要是河水、湖水、地下水和自来水，在疫区还包括稻田、塘水、井水和邻近畜舍、厕所的积水点。采样器具有用于手工采样的采样瓶和自动采样器。手工采样是将水样瓶用铁架固定，塞住瓶口，待瓶沉入到一定深度时拉开瓶塞，让水样进入。自动采样是用自动采样器在一定间隔时间中或连续采集样品，分别放入样品瓶或合并于一个样品瓶中成为混合样。疫区传染病病原污染的上述水体，采集时最好采非日光直射处的表层水。采集自来水样品时，先用酒精灯将水龙头烧灼消毒，然后将龙头打开，放水5～10分钟，再采集水样。采样量因工作条件和样品处理方法不同而不同，如直接用于增菌可采250～1000ml；先作絮凝或离心浓缩处理时，以每个采样点取100～200ml为宜。生活饮用水样微生物检验的采集和盛装容器均须无菌，如水中有余氯，在容器灭菌前应向内加入硫代硫酸钠以还原余氯。用于化学因子检测的水样盛装容器可以不灭菌，但应彻底清洗干净。
(3)土壤样本：根据检测目的选择有代表性的土壤，确定采样地点。按对角交叉(五点法)取样；用灭菌工具先除去地表枯枝落叶，再铲除1cm左右表层土，以避免地面微生物与土样混杂；用烧灼过的勺或铲取土样约200～300g，装于灭菌容器内，并注意保留适当空间，混合后，标明采样地点、深度、日期后送检。
综上可见，样品类型很多，而不同微生物，需要采集的样品和采样要求各异，表2-5、表2-6


为主要法定报告传染病检验标本采集的相关要求，供参考。表2．5主要法定报告细菌性传染病检验标本采集相关要求表2-6主要法定报告病毒性及其他传染病检验标本采集相关要求
4．产品样本包括食品、化妆品、涉水产品、消毒及卫生用品等，主要用于卫生理化和卫生微生物指标检测，对其进行卫生学评价及产品效果评价。采样方法和采样量参照国家相关标准执行。特别注意采样量的要求，以保证采样的代表性，请参考相关国家标准。还应注意包装的完整性和抽样的随机性。
5．用于调查中毒的样品中毒的因子可分为化学性、生物性和物理性三类，中毒的途径主要有消化道和呼吸道，而中毒的表现也各种各样，如急性胃肠炎、呼吸道症状、神经系统症状或者全身多器官损坏等，因此调查中毒的样品既包括食品、水、空气和食品接触的相关人员的样品，又包括中毒者的呕吐物、排泄物、血液等临床标本，而中毒的原因样品往往只能一次性提供。这些因素导致对调查人员的要求更高，除了采用正确的采样方法外，还应在采样前充分了解事件发生的相关背景资料，进行综合分析，制定初步采样计划，明确采样的目的，带足采样工具和适当的容器进行采集，避免漏掉重要的样品，从而影响对中毒患者病因的诊断和治疗方案的确定。在中毒标本采集中，中毒人员临床标本采集方法与前面类似，但有一些特点，因此再分述如下：
(1)胃内容物：是确定中毒的最好样本之一。可以通过收集患者呕吐物、洗胃液、胃内抽取液和尸体解剖获得。在采集时要注意避免污染，洗胃液最好采集最初抽出的，用高锰酸钾洗胃后的胃液意义要小些。在收集尸检材料中的胃内容物时，要注意胃的底部胃液的收集，因为比重大、溶解度低的物质往往沉淀于底部，如毒鼠强。采集的胃内容物量较大时，可取出后倾倒入一较大的玻璃漏斗内，漏斗的出口先塞住，混杂在胃内容物中的结晶和粉末将沉淀在漏斗底部，然后将上层液体和下层固体分别收集。在尸检中，对中毒迁延一段时间后才死亡的患者或生前已经进行洗胃的患者，要注意收集肠内容物。胃内容物的收集时效性强，错过了时机不能弥补。所采集的样本可用玻璃、聚乙烯或聚四氟乙烯器皿盛装，避免使用金属器皿。采集量最好达到100g(ml)以上。
(2)血液：是确诊中毒最主要的样本，因为某些经常可能服用的药物，如镇静催眠药剂，胃内容物中查到不能确诊，只有从血中检测到超过中毒量及死亡量时才能够确定。血液采集方法同前，应注意：①根据不同毒物在血液中的半减期决定采样时机；②选择恰当的盛装血样的容器，如疑为百草枯中毒患者的血液不能用玻璃试管，因为玻璃可以使百草枯钝化，钝化后的百草枯实验室不能检出；③注意密封，如疑为一氧化碳中毒者应尽早抽血5～15ml装满玻璃试管，必须用密封玻璃塞塞紧，避免瓶中残留空气，血液是分析一氧化碳中毒的惟一检材；对于其他易从样本中逸出的毒物也要密封保存，尽快检测，如氰化物；④尽量不加防腐剂和抗凝剂。
(3)尿液：毒物常以原形或其代谢物的形式排泄，因此尿液也是毒物检测的重要样品。尿液可直接收集、导出或注射器抽取，无尿者也可取膀胱冲洗液。尿液一般每次采集100ml，用玻璃或塑料瓶盛装，不加防腐剂；注意采集时间，一些毒物在中毒初期尿检阴性，如百草枯一般要在口服后2小时采集。
(4)食物中毒的标本：中毒人员临床标本采集方法同微生物分离培养部分。其他食物中毒标本有：①可疑食品和水样，采样时将残余食物或水样用灭菌镊子或匙采取后置于灭菌容器中；体积较大的鱼、肉应在表面消毒后取内部检样；要注意取样量，通常50～200g。②从业人员相关标本可采集从业人员以及直接或间接接触食品有关人员的肛拭子，或化脓性疾病的病灶，方法同前，相关人员的手用棉拭涂擦采样。③食物中毒环境的标本：炊事用具如锅、碗、刀等用棉拭涂擦采样，抹布剪小片放入稀释液，菜墩用刀刮取表面后，将刮取物放入灭菌容器中送检。④其他：可疑有毒动植物样本要保持完整，最好能够收集到完整的个体或整株植物，可疑有毒的部位(如种子、花等)采集的量要充分；可疑的蘑菇在采集时要注意不要碰掉容易脱落的菌环等，尽量保持其完整形态，以利种类鉴定。
(三)样品的保存和运输
保存和运输用于检测病原体的样品与用于检测化学物质(包括化学毒物)的样品各有其特点。
1．检测病原体样品的保存原则是尽量保护待检微生物和注意生物安全。保护待检微生物可以从温度、湿度、营养、pH和抑制杂菌等方面考虑，可通过温度调节、加入保护剂和去除其他不利于待测微生物生存的因素来实现。一般低温可增加微生物的存活和抑制杂菌的过度生长，但某些微生物如淋病奈瑟菌等检验的样品，应放置在适宜的温度条件下运送。有的样品要使用运送培养基。分离病毒的组织块可放于50％甘油缓冲液中(pH8．0)，在5~C条件下保存数周，也可用由0．5％水解蛋白，2％小牛血清，青、链霉素各500U／ml，制霉菌素50U／ml组成的溶液保存。分离鼠疫菌等革兰染色阴性菌多用卡一布半固体培养基运送，用经1／15mol／LpH8．1磷酸盐缓冲液处理过的棉棒采样后，插入培养基的底部，拧紧管口螺旋盖运送；在此培养基中保存1周，不影响细菌的检出。怀疑厌氧菌感染或需要进行厌氧菌检验的检样，必要时应使用运送培养基，保持在厌氧条件下运送。分离培养细菌或病毒的标本，若在48小时内检测，保存于4℃；若在48小时后检测，保存于-70℃，但原则是尽快检测，分离病毒的组织块冻存，应该加入防冻剂如甘油。寄生虫样本的保存，每份粪便中加入10％福尔马林和PVA存于4℃。
2．化学因子或毒物样品的保存各类样本要分别盛装于容器中，包装固定，及时冷藏保存。多数毒物检验样本对保存的条件不是特别严格，需要特殊条件保存的样本要在标签上和清单中标明，同时将保存条件要求告知具体承办人员，并注意防止外泄。样本不要加防腐剂，若为防止腐败必须加用时，可加乙醇(化学纯)，并附一瓶所用乙醇样品作对照。福尔马林是用于固定样本以便病理检查，不能用于毒物鉴定分析的样本中。
3．含病原体样品的运送除了按照上述条件注意保护待检微生物外，样品运送应符合生物安全要求。必须遵循WHO对传染性物质和诊断性标本的安全运送指南(WHO，1997)。标准的包装方法和材料应能确保即使在运送中包装意外受损时也能保护人员的安全及标本的完整。因此运送标本时最安全的方式是用由三个包装层对包装物进行三层包装。原始的容器要求能防漏，可盛容量不大于500ml。在原始容器与第二层包装之间应放置足以吸附可能的漏液的吸附材料，并辅以第二层防漏包装。如果在-二个第二层包装中安放了几个易碎的原始容器，那么，这些容器应该进行独立包装或分开以防互相碰撞。第三层外包装必须符合标准，如果要空运，一个完整的包装其整个外部最小尺寸不能小于10cm，每个包装中标本量不超过4kg或4L(每个原始容器最大500ml)。每个包装标本中所含的感染物不应超过50g或50ml。运输标本的外包装必须有明确的标签，标明寄送人和接收人的详细联系方式、包装日期和运输日期等。附带的文件包含标本的详细资料(材料的种类、性质、数量、采样日期)，相应的生物危害标签及所需的保存温度。地面运送标本时注意将装有标本的箱子牢牢固定在交通工具上，车上还应备有吸水材料、消毒剂、手套、口罩、护目镜、密封防水的废弃物容器等防护用品。为避免路途颠簸引起标本溶血，可在运送前分离血清。在国际、国家、商业的有关规定允许情况下，诊断标本也可空运，应注意规范包装。
4．化学因子或毒物样品的运送用密封性良好材料进行包装，送检的样本要根据对温度、湿度的要求分类处理。大多数样本都可以常温下运送，对需要特殊条件运送的样本要专门标出，需要冷藏的可以根据冷藏温度和运送所需时间决定用冷藏箱、车载冷柜等方式。在运送过程中，要保证条件能够持续保障。运送毒性高的环境样本，除在保障运送途中完整外，要严防泄漏，污染环境，并应严格按照化学品管理的有关规定及时到公安部门备案。为防止在运输过程中的意外情况，要制定应急预案，对剧毒化学品要专人押运。
(四)样品检测结果的判读原则
样品检测结果与流行病学调查结果，以及临床表现相符时，得出调查结论或进行卫生质量评价并不难。但在很多情况下，检验结果可能不支持调查结果，因此需要调查人员综合分析，查找原因，对检测结果进行正确的判读，最后得出比较可靠的推论。对检测结果进行正确判读应注意如下几点：①流行病学调查资料的可靠性；②样品采集时间是否恰当，样品量是否足够用于检测，样品保存和运送条件是否恰当；③检验方法的灵敏度和特异性如何?应详细了解检测过程和结果，尽量得到原始数据或图谱，对有结论性质的报告，分析其合理性和可靠性。

1．样品采集和现场检测
(1)目的和作用：样品采集是将室内空气被测组分准确地采集或富集到采样设备中，然后带回实验室进行分析。现场检测是利用国家标准中允许使用的快速检测设备进行现场测定的方法，正确使用现场直读仪器，可在短时间内掌握现场空气污染物浓度，了解污染状况。
(2)样品采集的基本原则
1)代表性：采集的样品必须能反映室内空气质量的总体水平。
2)典型性：应选择与调查目的相一致的空气样品采样，如对某餐厅的室内空气质量进行调查时，典型的空气污染物应为一氧化碳。
3)适时性和适用性：应根据调查目的确定采样时间和采样频率。同时，要根据被测组分的性质以及在空气中的存在状态，选择合适的采样仪器与采样方法，使之达到准确分析或富集的目的。
4)现场采样的质量控制：现场采样确定之后，应制定周密的采样计划，包括采样项目、采样点分布、采样时间、现场环境的控制等，采样时应尽量减少室内人员的活动，以免干扰室内空气的状况。每个样品只能有一个唯一性编号。
(3)样品采集方法：空气中的污染物大致可分为气态污染物和颗粒物两大类，不同的污染物样品采集方法不同，选用的仪器也有所不同。
1)气体污染物采样方法：在常温常压下以气体形式分散在大气中的污染物是气态污染物。如一氧化碳(CO)、二氧化碳(CO)二氧化硫(SO)、氮氧化物(NOx)、氨(NH)、臭氧(O)及甲醛(HCHO)、苯、甲苯、二甲苯等挥发性有机污染物(VOCs)。采集气态污染物主要有直接采样法和浓缩采样法两类。
直接采样法：当空气中被测组分浓度较高，或者所用分析方法很灵敏时，直接采取少量样品就可满足分析需要，常采用直接取样法。目前室内空气质量监测常用的直接采样包括注射器采样、塑料袋采样和真空瓶采样。
a．注射器采样法：选用气密性好的50ml或100ml注射器作为采集器。采集前检查注射器的密封效果并校正刻度，采样时先抽取现场空气3～5次，采样后将进气端套上乳胶帽或橡皮帽，在运输过程中应将进气端朝下，注射器活塞在上方。注射器采样法主要用于气相色谱法分析的样品采集。
b．塑料袋采样：选用与所采集的空气污染物不起化学反应、也不吸附和渗漏的塑料袋或铝箔袋作为采样容器（图2-1），连接一个特制的采气用二连球（图2-2），采样前先用现场空气将采样袋冲洗3～5次，然后采样，用乳胶帽封口，尽快送检。本法仅适用于采集不活泼气体如CO，一些对橡皮球有腐蚀性和活泼性气体不能用二连球采样。


c．真空瓶采样：选用500~1000ml两端具活塞的耐压玻璃瓶或不锈钢制成的真空采气管(图2-3)，先用真空泵将其内的空气抽出，使瓶内剩余压力小于2kPa，关闭活塞。然后将集气瓶带至采样点，将活塞慢慢打开，采集几小时至24h的空气样品，关闭活塞，迅速送检。此法广泛用于室内挥发性有机化合物的采样与分析。

浓缩采样法：室内空气中污染物浓度往往很低，用直接采样法所得的样品，通常不能满足分析方法最低检出量的要求，因而需要采集大量的气体进行浓缩。常用的浓缩方法有液体吸收法和固体吸附法
a．液体吸收法：利用空气污染物能迅速溶解于吸收液中或能与吸收剂迅速发生化学反应生成稳定的化合物的特性来浓缩污染物的一种方法。采样时用一个内装吸收液的液体吸收管与大气采样器(图2-4)连接，当空气通过吸收液时，被测组分的分子被吸收在溶液中，如空气中甲醛、氨、SO、NO及臭氧的采样均使用液体吸收法。

影响液体吸收管有效采集被测组分的因素有：被测组分溶于吸收液中的速度；气泡在吸收液中停留的时间；气泡的总面积或气泡的直径。目前常用的液体吸收管有气泡吸收管(图2-5)和多孔玻板吸收管(图2-6)。


b．固体吸附法：利用吸附剂的吸附作用、溶解、化学反应或阻留作用来达到浓缩空气中有害物质的一种采样方法。采样时将合适的吸附剂填充在一个直径3～5mm，长80~180mm的玻璃管或不锈钢管内，当空气样品以0.1~0.5L/min或2~5L/min流速通过填充柱（图2-7）时，空气中的被测组分被阻留在填充剂上，采样后选择适当的溶剂将被测物质洗脱下来。

目前室内空气质量调查时常用的固体吸附管有活性炭吸附管和Tenax吸附管，前者测定空气中苯系物（苯、甲苯、二甲苯），后者测定空气中总挥发性有机化合物(TVOC)。
2)颗粒物采样方法：空气中颗粒物采样方法很多，其中比较常用的是滤料采样法。采样时将滤料（滤纸或滤夹）放在采样器上（图2-8），用抽气泵通过滤料抽入空气，空气中的悬浮颗粒物质就被阻留在滤料上，送回实验室后分析滤料上被浓缩的污染物的含量，除以采样体积，即可计算空气中污染物的浓度。

目前室内空气中可吸入颗粒物和B(a)P的检测常常使用大流量采样装置采集空气样品。采用的滤料有定量滤纸、玻璃纤维滤纸、有机合成纤维滤料、微孔滤膜、直空滤膜和浸渍试剂滤料等。
(4)样品的保存和运输：不同的样品运输与保存有所不同，塑料袋采集样品后，应将采气口用止血夹夹紧，迅速移出采样点，尽快送回实验室分析。液体吸收法采集样品后，应尽快密封并迅速移出采样点，并在运输过程中放置在较安全的地方，避免吸收液溢洒或采样管破碎，送回实验室。如当天不能分析，应存放在冰箱冷藏室，并应在24h内分析。固体吸附法采样后，立即密封采样管的两端，并注明采样时的进气口端和出气口端。样品的保存由于各种不同污染物的安全保存期限不同，保存时间有所差异，但均应在安全保存期内分析。如空气中苯系物要求样品采集后应放在实验室干燥器中，并在5天内进行分析。挥发性有机化合物采样后密封采样管两端，将采样管放入可密封的金属或玻璃管中，样品可保存14天。
(5)现场检测：目前空气检测的部分项目如温度、相对湿度、空气流速、气压、一氧化碳、二氧化碳的测量常常用到现场直读仪的快速检测方法，正确使用现场直读仪器是保证调查结果准确度的重要因素。
现场直读仪使用注意事项：
1)应是国家标准、地方标准或行业标准中规定的检测设备。
2)测量范围与精度应符合国家标准方法的规定。
3)应经过有资质的部门进行检定，检定后，将合格证贴到一明显处，方可使用。
4)应按照仪器使用说明书定期对仪器进行保养和维护。
5)仪器在使用前应校准。
(6)检测结果的判读：室内空气检测结果的判读应遵循以下几条原则。
1)必须使用国家标准中规定的计量单位：目前我国室内空气质量标准包括19个参数，计量单位有所不同（表2-12），对测量结果判读时应注意参数的表示单位，如仪器显示值不是国家标准中规定的计量单位，应将测量值进行换算。

2)检测结果应进行有效位数修约：应参照GB8170-87《数值修约规则》，按照"四舍六入五单双"法则，进行数字修约。
2．常用的样品采集和检测方法
(1)空气温度：目前我国测定室内温度的标准方法有玻璃体温度计法和数显示温度计法。测定时，仪器应离开墙壁和热源0.5m以上。
玻璃体温度计法：温度计应放置5~10min后读数，读数时视线与温度计标尺垂直，水银温度计按凸出弯月面的最高点读数，酒精温度计应按凹入弯月面的最低点读数。
数显示温度计法：测定时采用数显示温度计（图2-9）。测定前，首先安装好电池，然后将仪器的传感器杆接好（或拔出），打开仪器开关，按照室内空气质量标准选点的要求测定室内空气温度。待测定完成后，关闭仪器开关，记录测得值。

(2)空气相对湿度：测定空气相对湿度的标准方法有通风干湿表法、氯化锂湿度法、电容式数字湿度计法等。电容式数字湿度计法是目前常用的测定方法，测定时采用数显式温湿度计。测定时，首先安装好电池，然后将仪器的传感器杆接好（或拔出），打开仪器开关，按照室内空气质量标准选点要求测定室内空气相对湿度。待测定完成后，关闭仪器开关，记录测得值。
(3)空气大气压：气压测定方法适用于气压为800~1064hPa环境的测定，高原空盒气压表可用于气压为500~1020 hPa环境的测定。测定时将空盒气压表（图2-10）直接带到现场，先读附温，准确到0.1℃，轻敲盒面，待指针摆动静止后读数。

(4)空气流速：测定空气流速的标准方法有热球式电风速计法和数字风速表法(图2-9)。

电风速计由测杆探头和测量仪表组成。测杆探头装有两个串联的热电偶、加热探头和镍铬丝圈。热电偶的冷端连接在碱铜质的支柱上，直接暴露在气流中。当一定大小的电流通过加热圈后，引起探头电流或电压改变，由于玻璃球被加热温度升高的程度与空气流速呈负相关，故可由仪器显示出来（表式），或通过显示器显示出来（数显式）。
表式热球电风速计测定空气流速时，按照室内空气质量标准中的要求选择监测点，将仪器按照说明书对"零位"和"满度"进行校准，拉动螺塞，使测杆探头露出，测感探头上的红点对准风向，从表头上正确读出仪器显示值。测定完成后，关闭仪器开关，记录测得值。
(5)一氧化碳：目前我国室内空气一氧化碳的检测方法主要有2种。
1)不分光红外线气体分析法（图2-11）：该方法可将仪器直接带到现场测定。仪器使用前应进行预热，尤其在冬季最好预热30min。

测定前，应用霍加拉特氧化管(霍加拉特氧化管的作用是将空气中的CO氧化成CO)进行仪器零点校准。然后通入CO标准气体仪器量程进行标定，待仪器读数与CO标准气体浓度相同时方可进行测定，并将校准结果记录在原始记录中。仪器全部调好后，以仪器本身泵动力的流量测定室内空气中CO浓度。
2)非分散红外法、气相色谱法和汞置换法：样品用500~600ml的聚乙烯塑料铝箱复合采气袋法采集后送回实验室分析。
采样时，用橡胶二连球，将空气打人采样袋内，膨胀后放掉。如此反复4次，最后一次打满后，密封进样口，写上标签，注明采样地点和时间，带回实验室在24h内分析。
(6)二氧化碳：测定低浓度二氧化碳(0.03%~0.5%)的方法主要有3种。
1)不分光红外线气体分析法(图2-11)：该方法可将仪器直接带到现场测定。

仪器使用前应进行预热，尤其在冬季最好预热30min。
测定前，应用高纯氮气或经干燥管和碱石灰过滤后的空气校准仪器的零点。然后通入CO标准气体对仪器量程进行标定，待仪器读数与CO标准气体浓度相同时方可进行测定，并将校准结果记录在原始记录中。仪器全部调好后，以仪器本身泵动力的流量测定室内空气中CO浓度。
2)气相色谱法：样品用500~600ml的聚乙烯塑料铝箔复合采气袋法采集后送回实验室分析。采样方法同CO。
3)容量滴定法：需用液体吸收法进行采样。
(7)可吸入颗粒物：检测方法主要有2种。
1)撞击式采样一重量法：空气中可吸入颗粒物采样方法主要利用可吸入颗粒物采样器，在一定的流量下，将可吸入颗粒物采集在预先恒重的玻璃纤维滤纸上，采样后将样品送回实验室再次恒重，根据采样前后滤纸重量之差及采样体积，计算可吸入颗粒物的浓度。
2)光散射法：该方法使用直读仪到现场直接测定，使用前应按照仪器使用说明书对仪器进行校准，调好采样时间进行测定。由每分钟的脉冲计数，换算为质量浓度(mg／m)。
(8)苯并[a]芘：目前空气中B(a)P的采样方法主要是将颗粒物中的多环芳烃采集在玻璃纤维滤膜上，送回实验室分析，采样方法见滤料法。
(9)菌落总数：室内空气菌落总数采样方法为撞击法。撞击法是将悬浮在空气中的带菌粒子撞击到营养琼脂平板上，经37℃，48h培养后，按照每立方米空气中的细菌菌落数表示(cfu/m)。采样时，将采样器消毒，按照仪器说明进行采样。选择撞击式空气微生物采样器的基本要求是对空气中的细菌捕获率达到95%，同时操作简便、携带方便、性能稳定及便于消毒。
(10)甲醛、氨等：空气中甲醛、氨、二氧化硫、二氧化氮及臭氧的采样均采用液体吸收法。
一般情况下，甲醛、氨使用气泡吸收管单管采样；SO、NO使用多孔玻板吸收管单管采样，在采样过程中避免日光直射；臭氧使用多孔玻板吸收管双管采样，采样时还应配有黑色避光套。
采样后记录采样时间、采样流量、温度和大气压。
(11)空气中苯系物及TVOC的采样：室内空气中苯系物（苯、甲苯、二甲苯）和TVOC使用固体吸收管采样，其中苯系物用活性炭管采集，TVOC用Tenax GC或Tenax TA吸附管采集。
采样时将吸附管与采样泵用硅橡胶管连接，选择合适的采样位置，打开采样泵，调节流量，在规定的时间采集样品，采样后将管取下，密封管的两端或将管放入可密封的容器内，记录采样时间、采样流量、现场温度与大气压力，将样品送回实验室分析。样品测定后，应准确校准每支采样管的流量，以当时采样时的温度和压力换算成标准状况下的采样体积。

(一)现场调查中样品采集的目的和原则
1．样品采集的目的通过对样品进行实验室检测，可以帮助我们对调查对象的健康状况做出判定，如对调查对象是否患有某些慢性病、患病的程度如何，以及是否处于高危阶段等做出诊断。
2．样品采集的原则血样的采集必须无菌采样。
慢性病现场调查时，采集的主要生物样品是空腹血标本。
(二)空腹血标本的采集方法
1．采血工具一次性负压真空采血(管、针)、止血带、碘酒、酒精或碘伏、棉签(棉球)。
2．采血要求被测者应当停止食用或饮用水以外的其他食物至少8个小时，因此测量最好在早晨进行。
(1)采血部位：静脉采血一般用肘部静脉，当肘部静脉不明显时，可采用手背静脉、手腕静脉及踝部静脉。如还是无法将血采出时，可选用股静脉。
(2)采血方法：
①首先在肘弯上5～10cm扎上止血带，嘱受检者握拳，肘下垫一棉垫，如静脉明显凸起时，常规消毒，左手拇指固定静脉穿刺部位的下端，右手持一次性负压真空采血针、针头斜面向上，呈15°～30°角穿刺，见回血后，插入负压真空采血管至所需血量，放松止血带，用无菌棉球(棉签)压住进针处拔针。如静脉不明显时，可用左手轻拍肘弯或轻轻揉搓，使其充血，或嘱患者重复几次握拳运动，使其充盈后采血；较肥胖的患者，可用左手示指在肘前轻压，再抬起，如触到有弹性感，即为肘前静脉。在此处用示指指甲轻压上一痕迹，再行无菌消毒。直刺血管进行采血。②手背静脉、手腕静脉、踝静脉与肘前部静脉采血方法基本相同。
(3)注意事项：采血后嘱受检者继续压住进针处5～10分钟，勿揉搓，以免穿刺部位淤血。
3．样品的保存和运输按需要，将血样在15分钟内在现场进行离心，3000～3500转／分离心10分钟，然后暂时放入简易冰盒保存，待所有血标本抽完后尽快送至指定实验室的指定负责人。
4．样品检测结果的判读使用自动生化仪进行血样的项目检测和数值的读取。
(三)餐后2小时血标本的采集方法
虽然空腹血浆血糖的检测费用相对低廉，特异性和准确性尚好，但是敏感度不足。因此，在对患者做出糖尿病的诊断时，需同时做口服葡萄糖耐量试验，该试验敏感性、特异性和准确性好，只是费时费力。
标准方法是：
1．于早晨7～9时开始，受试者空腹(禁食8小时以上)取血后，口服溶于200～300ml水内的无水葡萄糖75g，如用1分子水葡萄糖则为82．5g；儿童则按每公斤体重1．75g，总量不超，过75g，糖水在5分钟内服完。
2．从服第一口糖水开始计时，2小时取血，取血方法与空腹采血相同。
3．试验过程中，受试者不喝茶及咖啡，不吸烟，不做剧烈运动(但无需绝对卧床)。
4．试验前3天内，每天碳水化合物的摄入量不少于150g。
5．试验前，停用可能影响试验结果的药物，如避孕药、利尿剂、苯妥英钠等3～7天。
(四)使用血糖仪进行血糖的检测
除常规通过采集血标本，进行血糖的检测以外，还可以使用血糖检测仪来进行血糖的检测。该方法简单、易于操作、读数迅速、对受试者损伤小。
1．测量仪器血糖检测仪、针头、试纸、75％的酒精、棉签或棉球、医疗废弃物垃圾桶。
2．测量要求
(1)被测者应禁食至少8个小时，因此测量最好在早晨进行。
(2)选择被测者的无名指进行采血，如果手指在近期内受过伤，则选择其他手指。
(3)测量前必须对被测者的采血手指进行消毒处理，并确保手指皮肤晾干后再采血。
3．测量步骤
(1)询问被测者在过去8个小时里，除了喝水外有没有进食，并询问其愿意在左手还是右手采血。
(2)测量者应戴医用橡胶手套，按摩被测者的一个手指，最好是中指或无名指(避免拇指、小指、严重硬化或者有伤疤、伤口、感染的手指)，加速局部血液循环，以便采血。消毒指尖采血部位。
(3)从试纸筒内取出试纸，将试纸背面圆形质控窗内的颜色与试纸包装筒上所印的色阶对比，确保质控窗的颜色与最顶部色阶一致(0mmol／L)。
(4)手持试纸，让测试区和箭头方向朝上，顺着箭头方向将试纸插入血糖仪的试纸槽，确保听到"咔哒"声，以保证试纸正确插入。
(5)用采血针刺入已按摩过的指尖侧面。稍稍挤压手指形成一小血滴(注意不要过分挤压手指)。
(6)从血糖仪拨出试纸，将血滴在试纸橘红色区域的测试区中央(方形垫)。测试区可轻触但不要涂抹。务必在20秒钟内将试纸重新插回血糖仪并且听见"咔哒"声。也可不拔出试纸，将血直接滴在试纸橘红色测试区域。测试区可轻触但不要涂抹，如果血量不够，必须在5
秒钟内追加第二滴血。
(7)血糖仪发出短暂提示音(提示音开启时)，确认血滴并开始检测。检测过程中不要移动试纸，否则会得到错误的结果。
(8)约10秒钟后血糖仪再次发出提示音，检测已经完成。检测结果显示在显示屏上。取出试纸，血糖仪自动关机。如果之前未拔出试纸，则在约5秒钟后血糖仪再次发出提示音，检测完成。此时可记录读数。
(9)给采血针盖上保护帽，滑动弃针栓，将试纸与采血针一同丢弃到医疗废品篓。

在现场调查中，很重要的一项下作是正确采集、妥善保存和尽快送检样品，以及随后对样品检测结果进行正确的判读和分析。